SISTEMA PARA LA VALIDACION CUANTITATIVA Y CUALITATIVA INTERNA DE INDICES DE MARCADORES.

Un pseudo-tejido que comprende una mezcla sustancialmente homogénea de dos o más poblaciones de células de células fijas incluidas en una matriz,

estando dicha matriz construida a partir de un material seleccionado del grupo que consiste en plásticos, parafina o derivados de parafina, agarosa, suero sin heparina, colágeno, derivados de celulosa, derivados de quitina, derivados de quitosano y mezclas de los mismos, en el que cada una de dichas poblaciones de células se obtiene a partir de una única línea de células y comprende células que son sustancialmente idénticas unas a otras con respecto al número de uno o más marcador(es) seleccionados del grupo que consiste en marcadores de la proliferación, receptores de hormonas, compuestos del citoesqueleto, marcadores hematológicos, productos oncógenos, receptores nucleares, aberraciones cromosómicas y agentes infecciosos, y en el que dichas dos o más poblaciones de células difieren una de otra en que las células de una población no son sustancialmente idénticas a las células de otra población con respecto al número de dicho uno o más marcador(es) específicos, en el que dichas células de dicha una o más poblaciones de células están fijas con anterioridad a su incorporación en la matriz

Tipo: Resumen de patente/invención. Número de Solicitud: W0100717EP.

Solicitante: DAKO A/S.

Nacionalidad solicitante: Dinamarca.

Dirección: PRODUKTIONSVEJ 42,2600 GLOSTRUP.

Inventor/es: GERDES, JOHANNES.

Fecha de Publicación: .

Fecha Concesión Europea: 4 de Noviembre de 2009.

Clasificación Internacional de Patentes:

  • G01N33/574V

Clasificación PCT:

  • C12N5/00 QUIMICA; METALURGIA.C12 BIOQUIMICA; CERVEZA; BEBIDAS ALCOHOLICAS; VINO; VINAGRE; MICROBIOLOGIA; ENZIMOLOGIA; TECNICAS DE MUTACION O DE GENETICA.C12N MICROORGANISMOS O ENZIMAS; COMPOSICIONES QUE LOS CONTIENEN; PROPAGACION, CULTIVO O CONSERVACION DE MICROORGANISMOS; TECNICAS DE MUTACION O DE INGENIERIA GENETICA; MEDIOS DE CULTIVO (medios para ensayos microbiológicos C12Q 1/00). › Células no diferenciadas humanas, animales o vegetales, p. ej. líneas celulares; Tejidos; Su cultivo o conservación; Medios de cultivo para este fin (reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00).
  • G01N33/574 FISICA.G01 METROLOGIA; ENSAYOS.G01N INVESTIGACION O ANALISIS DE MATERIALES POR DETERMINACION DE SUS PROPIEDADES QUIMICAS O FISICAS (procedimientos de medida, de investigación o de análisis diferentes de los ensayos inmunológicos, en los que intervienen enzimas o microorganismos C12M, C12Q). › G01N 33/00 Investigación o análisis de materiales por métodos específicos no cubiertos por los grupos G01N 1/00 - G01N 31/00. › para el cáncer.

Clasificación antigua:

  • C12N5/00 C12N […] › Células no diferenciadas humanas, animales o vegetales, p. ej. líneas celulares; Tejidos; Su cultivo o conservación; Medios de cultivo para este fin (reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00).
  • G01N33/574 G01N 33/00 […] › para el cáncer.
SISTEMA PARA LA VALIDACION CUANTITATIVA Y CUALITATIVA INTERNA DE INDICES DE MARCADORES.

Fragmento de la descripción:

Sistema para la validación cuantitativa y cualitativa interna de índices de marcadores.

Campo de la técnica

La presente invención se refiere a una herramienta para su uso en la validación cualitativa y cuantitativa de índices de marcadores, especialmente para la diagnosis médica, la prognosis y de relevancia terapéutica tales como para la determinación de la fracción de crecimiento en una muestra con anticuerpos frente a la proteína K-67.

Técnica anterior

La determinación de marcadores y de índices de marcadores es un componente integral de la diagnosis médica moderna en los más variados campos médicos. Por consiguiente, por ejemplo, la determinación de la relación de la lipoproteína de alta densidad (HDL) a la lipoproteína de baja densidad (LDL) es parte de la rutina de los análisis de sangre; la determinación de la relación de células sanguíneas positivas CD4 a CD8 es uno de los parámetros más importantes en la diagnosis del SIDA; en la diagnosis de tumores, por ejemplo en el cáncer de pecho, la determinación del estado del receptor de la hormona se considera que es un indicador para el tratamiento que sigue a una operación. Debido a que las más variadas estructuras sirven como marcadores, los métodos de determinación son también diversos: ELISA, RIA, valoraciones químicas y/o bioquímicas, FACS, análisis luminométricos, nefelométricos, densitométricos, etc., los cuales son bien conocidos por las personas especializadas.

En la diagnosis de tumores, el examen de una sección de tejido fina y/o el examen citológico de una muestra es todavía el método de elección. Para este propósito, el patólogo experimentado aplica métodos histoquímicos, e inmunohistoquímicos y/o citoquímicos e inmunocitoquímicos en un grado creciente. Así, el estado del receptor de la hormona mencionado anteriormente se determina inmunohistológicamente y/o inmunocitológicamente en el cáncer de pecho. (En lo sucesivo, el término inmunohistoquímico abarca el inmunohistológico así como también el inmunocitológico). En todas las determinaciones del marcador, la persona especializada se debe asegurar de que los sistemas de ensayo sean capaces de ser validados cualitativa y cuantitativamente. La validación de algunos marcadores se puede efectuar mediante su calibrado frente a un patrón interno o externo y la generación de curvas de calibrado a través de medidas paralelas frente a controles positivos y negativos. Sin embargo, generalmente estos métodos de validación son muy caros y de larga duración.

En inmunohistoquímica, una validación tal, y especialmente una validación cuantitativa, no es un asunto trivial, debido a que los estuches (kits) comerciales para la representación del marcador inmunohistoquímico bien no contienen en modo alguno un control interno o, por ejemplo como sucede con el receptor de la hormona, contienen preparaciones celulares que son bien positivas o bien negativas, es decir sólo permiten una decisión de sí/no y por lo tanto sólo se pueden considerar en el mejor de los casos como una validación semi-cuantitativa.

En un estuche HercpTestTM Code Nº K 5204 de tinción inmunocitoquímica comercializado por DAKO, se conoce que dispone de un portaobjetos de control para la validación de una operación de tinción para un cáncer de pecho. Este portaobjetos de control comprende tres grupos discretos y no mezclados de células de línea de células (tipos de células específicas) con una puntuación de intensidad conocida. Mediante el control de si los grupos de células de línea de células proporcionan los resultados previamente conocidos en un procedimiento de tinción, se puede validar el procedimiento de tinción.

Así, en la práctica, el patólogo experimentado realiza una determinación paralela del marcador a examinar sobre casos bien caracterizados y ensayados previamente procedentes de su archivo. Este método es, por una parte, técnicamente incierto o al menos sujeto a controversia como consecuencia de la conocida heterogeneidad de los tejidos y, por otra parte, éticamente cuestionable, lo que hace imposible una realización comercial de este procedimiento.

Desde el principio del siglo 20, los parámetros para la determinación de la actividad de proliferación han sido ya un componente integral en la diagnosis histopatológica de tumores. Inmunohistológicamente, el retrato de las estructuras que controlan el ciclo de división celular se usa como marcadores de la proliferación. Muchas de las proteínas asociadas al ciclo celular participantes se expresan momentáneamente en fases de ciclo celular único. En contraste con esto, la proteína nuclear Ki-67 (Gerdes, J., y colaboradores., Int. J. Cancer, 1983, 31: 13-20) es detectable en todas las fases activas del ciclo celular, es decir G1, S, G2 y en la mitosis, mientras que las células de la fase restante (GO) son consistentemente negativas para esta proteína (Gerdes, J., y colaboradores., J. Immunol., 1984, 133: 1710-1715). Esto significa que la expresión de la proteína Ki-67 (índice marcador Ki-67) puede servir como una medida para la fracción de crecimiento de una población celular dada. Por esto, los anticuerpos frente a la proteína Ki-67 han encontrado un amplio uso en histopatología, especialmente en numerosos estudios sobre el uso como un marcador para la evaluación de la malignidad en las neoplasias humanas (Sawhney, N. y Hall, P. A., J. Pathol, 1992, 168:161-162; Schwarting, R., Lab. Invest., 1993, 68:579-599; Lelle, R. J., y colaboradores., Cancer, 1987, 59:83-88; Lokhorst, H. M., y colaboradores., J. Clin. Invest, 1987, 79:1401-1411; Gerdes, J. y colaboradores., Am. J. Path., 1987, 128:330-334 y 129:486-492).

En estudios retrospectivos sobre diversas entidades de tumos, el papel del índice de marcador de la Ki-67 como un marcador de la prognosis se trata de una manera diferente. Mientras que se describió una unánime correlación entre el tiempo de supervivencia de los pacientes y el índice del marcador Ki-67 para los linfomas del tipo no de Hodgkinn malignos (Gerdes, J. y colaboradores., 1987, Lancet, ii 448-449; Grogan, T. M. y colaboradores., 1988 Blood, 71:-1157-1160; Hall, P. A. y colaboradores., J. Pathol. 1988, 154:223-235), esto se ha tratado de forma controvertida en parte para el cáncer de pecho: Harberg y colaboradores (Prognostic and relevant therapy factors in breast cancer, Novartis Pharma Publishers, Nürnberg, 1997) no encontraron correlación en un análisis multivariante, mientras que Querzoli, P. y colaboradores., J. Clin. Pathol. Noviembre de 1996, 49(11): 926-930; Veronese, S. M. y colaboradores., Anicancer Res. Noviembre de 1995, 15(6B): 2717-2722; Clahsen, P. C. y colaboradores., J. Clin. Oncol.. Febrero de 1998, 16(2): 470-479; Rozan, S. y colaboradores., Int. J. Cancer Febrero de 1998, 79(1):27-33; Jansen R. L. y colaboradores., Br. J. Cancer Agosto de 1998, 78(4):433-437; probaron de un modo concluyente que el retrato de la proteína Ki-67 en secciones de parafina con el anti-cuerpo monoclonal MIB-1 en el análisis estadístico multivariante es un parámetro de pronostico independiente en el cáncer de pecho. Aaltoma y colaboradores., 1997, Eur. Urol. 32: 410-415 y Borre y colaboradores., 1998, J. Urol. 159. 1609-1614, demostraron que el índice del marcador Ki-67 es también un parámetro de pronostico independiente para el carcinoma de próstata, mientras que Coetze y colaboradores., 1997, J. Urol. 157: 214-218, cuestionaron el valor del índice de marcador Ki-67 como un indicador para el pronóstico, y Uzoaru y colaboradores., 1998, J. Surg. Oncol. 67: 33-37, incluso concluyeron que el índice de marcador Ki-67 no permite cualquier prognosis significativa en lo que respecta a la supervivencia de los pacientes.

Como se demostró anteriormente por medio del ejemplo sobre los receptores de la hormona, una normalización de las técnicas de inmunotinción así como también una validación interna del análisis cuantitativo no ha sido posible hasta ahora incluso con la promoción del índice de marcador Ki-67.

Sumario de la Invención

Por lo tanto, un objeto de la invención es proporcionar una herramienta para su uso en la validación cualitativa y/o cuantitativa de los índices de marcador, especialmente en la prognosis médica, la diagnosis, tal como en la diagnosis inmunohistoquímica, y especialmente para la validación de un índice marcador Ki-67, y en la determinación de la relevancia terapéutica.

Un objetivo adicional de la invención es proporcionar una herramienta para la validación de índices marcadores, la cual herramienta es relativamente rápida y fácil de usar y puede proporcionar un resultado fiable.

 


Reivindicaciones:

1. Un pseudo-tejido que comprende una mezcla sustancialmente homogénea de dos o más poblaciones de células de células fijas incluidas en una matriz, estando dicha matriz construida a partir de un material seleccionado del grupo que consiste en plásticos, parafina o derivados de parafina, agarosa, suero sin heparina, colágeno, derivados de celulosa, derivados de quitina, derivados de quitosano y mezclas de los mismos, en el que cada una de dichas poblaciones de células se obtiene a partir de una única línea de células y comprende células que son sustancialmente idénticas unas a otras con respecto al número de uno o más marcador(es) seleccionados del grupo que consiste en marcadores de la proliferación, receptores de hormonas, compuestos del citoesqueleto, marcadores hematológicos, productos oncógenos, receptores nucleares, aberraciones cromosómicas y agentes infecciosos, y en el que dichas dos o más poblaciones de células difieren una de otra en que las células de una población no son sustancialmente idénticas a las células de otra población con respecto al número de dicho uno o más marcador(es) específicos, en el que dichas células de dicha una o más poblaciones de células están fijas con anterioridad a su incorporación en la matriz.

2. Un pseudo-tejido de acuerdo con la reivindicación 1, en el que el uno o más marcador(es) se selecciona(n) del grupo que consiste en lípidos, liposacáridos, azúcares, proteínas, estructuras de la membrana celular con y sin caracterización CD, nucleótidos citoplásmicos, y ácidos nucleicos.

3. Un pseudo-tejido de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en el que los marcadores son detectables, preferiblemente mediante el uso de técnicas inmunohistológicas, inmunocitológicas, de hibridación, enzimáticas, inmunofluorescencia, y/o inmunoenzimáticas.

4. Un pseudo-tejido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-3, en el que el uno o más marcadores se selecciona del grupo que consiste en Ki-67, receptor de estrógeno, receptor de progesterona, receptor de andrógeno, y c-myc.

5. Un pseudo-tejido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-4, en el que la relación de células de dos poblaciones de células diferentes está en el intervalo de 1:109-109:1, y preferiblemente en el intervalo de 1:20-20:1.

6. Un pseudo-tejido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-5, efectuándose dicha fijación preferiblemente mediante el uso de uno o más agentes de fijación seleccionados del grupo que consiste en formalina, aldehído glutárico, tetra-óxido de osmio, ácido acético, etanol, acetona, ácido pícrico, cloroformo, dicromato de potasio y cloruro mercúrico y/o usando la fijación térmica o la fijación por congelación.

7. Un estuche de diagnóstico que comprende un pseudo-tejido según se define en una cualquiera de las reivindicaciones 1-6.

8. Un estuche de diagnóstico de acuerdo con la reivindicación 7, en el que el estuche comprende además un componente o un conjunto de componentes para la detección del marcador, dicho componente o conjunto de componentes incluye preferiblemente uno o más anticuerpos y/o derivados activos de los mismos, sondas de DNA o RNA, oligonucleótidos sintéticos, PNA, LNA, dicho componente puede estar unido preferiblemente a una o más enzimas y/o compuesto fluorescente, siendo preferiblemente dicho conjunto de componentes una enzima y un reactivo para la detección de una enzima.

9. Un estuche de diagnóstico de acuerdo con la reivindicación 8, en el que el marcador es la proteína Ki 67 y el componente para la detección del marcador es un anti-cuerpo dirigido contra la proteína Ki 67, y siendo dicho anticuerpo preferiblemente un elemento de la familia MIB®, y más preferiblemente MIB®-1.

10. Un estuche de diagnóstico de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 7-9, en el que el estuche comprende dos o más pseudo-tejidos según se definió en una cualquiera de las reivindicaciones 1-6, teniendo dichos dos o más pseudo-tejidos índices de marcador diferentes para uno o más de los marcadores específicos, definidos como el número de células positivas de marcador para dicho marcador específico en porcentaje.

11. Un método de análisis parra la determinación cualitativa y/o cuantitativa de índices de marcador de una fracción de células marcadas mediante dicho marcador para la diagnosis in vitro, comprendiendo dicho método las etapas de:

    i) proporcionar un pseudo-tejido según se define en una cualquiera de las reivindicaciones 1-6, teniendo dicho pseudo-tejido una calidad y/o cantidad previamente determinada de marcadores;
    ii) someter la fracción de células y el pseudo-tejido a un componente o un conjunto de componentes para la detección de las reacciones del marcador;
    iii) determinar la calidad y/o cantidad de marcadores de la fracción de células mediante el uso de las reacciones del marcador detectadas del pseudo-tejido.

12. Un método de análisis de acuerdo con la reivindicación 11, en el que dicho método se realiza mediante el uso de un estuche de diagnóstico según se define en una cualquiera de las reivindicaciones 7-10.

13. Un método de análisis de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 11 ó 12, comprendiendo dicho método además la etapa de la determinación cuantitativamente y/o cualitativamente de uno o más marcadores adicionales, determinándose dichos uno o más marcadores adicionales mediante el uso de uno o más pseudo-tejidos que comprenden al menos una población de células que tienen diferentes índices de marcador para dichos uno o más marcadores adicionales.

14. Un método para la producción de un pseudo-tejido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-6, que comprende las etapas siguientes de:

    i) selección de una primera población de células que comprende células que son células sustancialmente idénticas unas a otras con respecto al número de uno o más marcador(es) específicos;
    ii) selección de una segunda población que comprende células que son células sustancialmente idénticas unas a otras con respecto al número de dicho uno o más marcador(es) específicos, dichas células de dicha segunda población de células difieren de las células de dicha primera población de células con respecto al número de uno o más marcador(es) específicos,
    iii) incorporar la primera y la segunda población de células dentro de una matriz.

15. Un método para la producción de un pseudo-tejido de acuerdo con la reivindicación 14, en el que el número de células en el primer grupo de células con respecto al número de células en el segundo grupo de células está determinado previamente, y está preferiblemente en el intervalo de 1:109-109:1, y preferiblemente en el intervalo de 1:20-20:1.

16. Un método para la producción de un pseudo-tejido de acuerdo con la reivindicación 14 ó 15, que comprende además la etapa de cortar la matriz con las células en láminas, que tienen preferiblemente un espesor de hasta aproximadamente 100 µm, más preferiblemente entre 50 nm y 100 µm, e incluso más preferiblemente laminas finas entre 80 y 120 nm o láminas gruesas entre 2 y 5 µm.

17. Uso del estuche de diagnóstico de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 7-10 para la cuantificación y/o cualificación de uno o más marcador(es) en una muestra.

18. Uso del estuche de diagnóstico de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 7-10 para la determinación del índice de proliferación.

19. Uso del estuche de diagnóstico de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 7-10 para la diagnosis in vitro en la diagnosis y tratamiento del cáncer.

20. Uso del pseudo-tejido según se definió en una cualquiera de las reivindicaciones 1-6 para las validaciones de un índice de marcador de una muestra de ensayo.

21. Sistema de detección para la determinación cuantitativa y/o cualitativa de una molécula, comprendiendo dicho sistema un pseudo-tejido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-6 y una sustancia de detección para la detección específica de la molécula a determinar.


 

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