INTEGRACION ALEATORIA DE UN POLINUCLEOTIDO DESPUES DE LINEALIZACION IN VIVO.

Un procedimiento no terapéutico para integrar aleatoriamente un polinucleótido en un genoma de la célula huésped mediante preparación en la célula huésped de dicho polinucleótido lineal que tiene extremos 5'' y 3'' libres a partir de un vector,

en el que dicho procedimiento comprende:

a) Introducir en dicha célula huésped un vector que no tiene extremos 5'' y 3'' libres y que comprende dicho polinucleótido, comprendiendo dicho vector al menos un sitio de escisión que no se encuentra en el genoma de la célula huésped;

b) producir la escisión de dicho(s) sitio(s) en dicha célula huésped, creando o liberando así dicho polinucleótido en una forma lineal que tiene extremos 5'' y 3'' libres a partir de dicho vector en dicha célula huésped; y,

c) mantener la célula huésped en condiciones y durante un periodo de tiempo suficiente para producir la integración aleatoria de dicho polinucleótido liberado en dicho genoma de la célula huésped,

y en el que dicha célula huésped es una célula no humana

Tipo: Patente Internacional (Tratado de Cooperación de Patentes). Resumen de patente/invención. Número de Solicitud: PCT/EP02/10224.

Solicitante: CELLECTIS.

Nacionalidad solicitante: Francia.

Dirección: 102, ROUTE DE NOISY,93230 ROMAINVILLE.

Inventor/es: CHOULIKA, ANDRE, JOLY,JEAN-STEPHANE, THERMES,VIOLETTE, RISTORATORE,FILOMENA.

Fecha de Publicación: .

Fecha Concesión Europea: 28 de Abril de 2010.

Clasificación Internacional de Patentes:

  • C12N15/90 SECCION C — QUIMICA; METALURGIA.C12 BIOQUIMICA; CERVEZA; BEBIDAS ALCOHOLICAS; VINO; VINAGRE; MICROBIOLOGIA; ENZIMOLOGIA; TECNICAS DE MUTACION O DE GENETICA.C12N MICROORGANISMOS O ENZIMAS; COMPOSICIONES QUE LOS CONTIENEN (biocidas, productos que repelen o atraen a los animales nocivos, o reguladores del crecimiento de los vegetales, que contienen microorganismos virus, hongos microscópicos, enzimas, productos de fermentación o sustancias obtenidas por o extraídas de microorganismos o sustancias animales A01N 63/00; preparaciones de uso médico A61K; fertilizantes C05F ); PROPAGACION,CULTIVO O CONSERVACION DE MICROORGANISMOS; TECNICAS DE MUTACION O DE INGENIERIA GENETICA; MEDIOS DE CULTIVO (medios para ensayos microbiológicos C12Q 1/00). › C12N 15/00 Técnicas de mutación o de ingeniería genética; ADN o ARN relacionado con la ingeniería genética, vectores, p. ej. plásmidos, o su aislamiento, su preparación o su purificación; Utilización de huéspedes para ello (mutantes o microorganismos modificados por ingeniería genética C12N 1/00, C12N 5/00, C12N 7/00; nuevas plantas en sí A01H; reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00; nuevas razas animales en sí A01K 67/00; utilización de preparaciones medicinales que contienen material genético que es introducido en células del cuerpo humano para tratar enfermedades genéticas, terapia génica A61K 48/00; péptidos en general C07K). › Introducción estable de ADN extraño en el cromosoma.

Clasificación PCT:

  • A01K67/027 SECCION A — NECESIDADES CORRIENTES DE LA VIDA.A01 AGRICULTURA; SILVICULTURA; CRIA; CAZA; CAPTURA; PESCA.A01K CRIA; AVICULTURA, PISCICULTURA, APICULTURA; PESCA; OBTENCION DE ANIMALES, NO PREVISTA EN OTRO LUGAR; NUEVAS RAZAS DE ANIMALES.A01K 67/00 Cría u obtención de animales, no prevista en otro lugar; Nuevas razas de animales. › Nuevas razas de vertebrados.
  • C12N15/00 C12N […] › Técnicas de mutación o de ingeniería genética; ADN o ARN relacionado con la ingeniería genética, vectores, p. ej. plásmidos, o su aislamiento, su preparación o su purificación; Utilización de huéspedes para ello (mutantes o microorganismos modificados por ingeniería genética C12N 1/00, C12N 5/00, C12N 7/00; nuevas plantas en sí A01H; reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00; nuevas razas animales en sí A01K 67/00; utilización de preparaciones medicinales que contienen material genético que es introducido en células del cuerpo humano para tratar enfermedades genéticas, terapia génica A61K 48/00; péptidos en general C07K).
  • C12N15/55 C12N 15/00 […] › Hidrolasas (3).
  • C12N15/64 C12N 15/00 […] › Métodos generales para la preparación del vector, para su introducción en la célula o para la selección del huésped que contiene el vector.
  • C12N15/79 C12N 15/00 […] › Vectores o sistemas de expresión especialmente adaptados a huéspedes eucariotas.
  • C12N15/90 C12N 15/00 […] › Introducción estable de ADN extraño en el cromosoma.
  • C12N5/10 C12N […] › C12N 5/00 Células no diferenciadas humanas, animales o vegetales, p. ej. líneas celulares; Tejidos; Su cultivo o conservación; Medios de cultivo para este fin (reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00). › Células modificadas por introducción de material genético extraño, p. ej. células transformadas por virus.

Clasificación antigua:

  • A01K67/027 A01K 67/00 […] › Nuevas razas de vertebrados.
  • C12N15/00 C12N […] › Técnicas de mutación o de ingeniería genética; ADN o ARN relacionado con la ingeniería genética, vectores, p. ej. plásmidos, o su aislamiento, su preparación o su purificación; Utilización de huéspedes para ello (mutantes o microorganismos modificados por ingeniería genética C12N 1/00, C12N 5/00, C12N 7/00; nuevas plantas en sí A01H; reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00; nuevas razas animales en sí A01K 67/00; utilización de preparaciones medicinales que contienen material genético que es introducido en células del cuerpo humano para tratar enfermedades genéticas, terapia génica A61K 48/00; péptidos en general C07K).
  • C12N15/55 C12N 15/00 […] › Hidrolasas (3).
  • C12N15/64 C12N 15/00 […] › Métodos generales para la preparación del vector, para su introducción en la célula o para la selección del huésped que contiene el vector.
  • C12N15/79 C12N 15/00 […] › Vectores o sistemas de expresión especialmente adaptados a huéspedes eucariotas.
  • C12N15/90 C12N 15/00 […] › Introducción estable de ADN extraño en el cromosoma.
  • C12N5/10 C12N 5/00 […] › Células modificadas por introducción de material genético extraño, p. ej. células transformadas por virus.

Fragmento de la descripción:

Integración aleatoria de un polinucleótido después de linealización in vivo.

Antecedentes Campo de la invención

La invención se refiere a un procedimiento de liberación in vivo de un fragmento de ADN lineal de un vector con el fin de integrar este fragmento en el genoma celular. La invención se refiere además al uso de este procedimiento y a los resultados de este uso.

Breve descripción de la técnica anterior

El primer gran avance de la genética inversa hace 20 años fue la transgénesis. La transgénesis es la técnica que permite introducir una secuencia de ADN exógeno en una célula huésped. Por ejemplo, la microinyección de ADN en un huevo fecundado por mamífero conduce, en un cierto número de casos, a la integración de la molécula de ADN microinyectado en el genoma del huevo fecundado. La transgénesis implica que un fragmento de ADN extraño se introduzca en el genoma de un organismo multicelular y se transmita a la progenie. Por tanto, el ADN extraño debe estar presente en una forma estable en el embrión en una fase precoz de desarrollo con el fin de transmitirse a la progenie.

La transfección de ADN en células de mamífero por medio de precipitación de fosfato de calcio precipitado también puede conducir, en un cierto número de casos, a la integración del ADN exógeno en el genoma de la célula huésped que se llama transfección estable. El ADN exógeno puede introducirse en células bajo dos formas, bien lineal o circular. Cuando el ADN se introduce en forma lineal, el fragmento lineal se prepara in vitro antes de su introducción en la célula huésped, generalmente por escisión del fragmento deseado con enzima de restricción de, por ejemplo, un plásmido. En lo que se refiere al ADN en forma circular, el ADN introducido es generalmente un plásmido superenrollado.

Todas las células tienen sistemas de mantenimiento y reparación de su ADN. Una de las señales particulares de estrés que activa la intervención de estos sistemas es la generación de extremos libres de ADN en la célula. La célula tiene entonces dos soluciones para resolver este tipo de problema:

- La primera solución es la degradación del ADN que presenta los extremos libres (por ejemplo, el caso en el que la célula debe eliminar un ADN que puede tener una actividad viral). Esta solución se basa en la presencia en estos sistemas de mantenimiento y reparación de exonucleasas que degradan el ADN digeriéndolo a partir de los extremos libres.
- Otra solución es la recombinación de los extremos libres con el genoma celular. Esta recombinación puede tomar diferentes formas, particularmente la integración de la molécula exógena en el genoma de la célula.

Como consecuencia, los trabajos que tienen como objetivo integrar el ADN exógeno mediante la introducción de ADN bicatenario desnudo en forma circular o lineal se encuentran con tres tipos de problemas principales, además de un cierto número de problemas colaterales.

- El primero de estos problemas es la eficiencia de la integración de la molécula exógena en el ADN del huésped celular. Esta falta de eficiencia implica la inyección de una cantidad muy alta de ADN exógeno para un número muy pequeño de integración. En algunas especies tales como peces, plantas o insectos, las exonucleasas son tan eficaces que el ADN exógeno nunca se integra en el cromosoma y permanece episomal. Por ejemplo, si se usa la forma circular para el ADN exógeno, para tener la integración es necesario una mella. De hecho, el procedimiento de integración necesita la presencia de un extremo libre. Si se usa la forma lineal, la mayoría del ADN exógeno es degradada por las exonucleasas debido a la presencia de los extremos libres.
- El segundo problema es la integridad del ADN integrado. El fragmento lineal de ADN exógeno expone sus extremos libres a las exonucleasas celulares antes de su llegada al núcleo. Esta exhibición prolongada de sus extremos en la célula limita de una forma significativa las oportunidades del ADN exógeno para integrarse completamente en el genoma celular. Una forma para aumentar las oportunidades de integrarse completamente en el genoma consiste en añadir algunos nucleótidos protuberantes de ADN monocatenario cohesivos a cada extremo del ADN exógeno, por ejemplo, preparados por digestión con la misma enzima de restricción. Estas extremidades cohesivas permiten que los fragmentos de ADN se asocien en un multímero y evitan la degradación completa del ADN antes de su integración. Otra forma para aumentar las oportunidades es rodear el fragmento de ADN para integrarlo con secuencias de ADN largas y neutras. En el caso del ADN exógeno está incluido en un plásmido superenrollado, el fragmento integrado comprende no sólo el ADN exógeno, sino también el vector completo.
- El tercer problema es el control del número de copias integradas. La multimerización, deliberada o no, del ADN exógeno presenta el inconveniente de favorecer la inserción de varias copias del fragmento de ADN exógeno. Similarmente, cuando el ADN exógeno tiene una forma circular, el plásmido se integra como un concatémero. Esta inserción múltiple tiene por consecuencia introducir una inestabilidad de cromosoma y dar como resultado problemas de regulación de la expresión debido a la presencia del mismo gen en múltiples copias.

La transgénesis es más que nunca una herramienta esencial para los biólogos. El estudio de enfermedades humanas se basa en gran parte en el uso de modelos animales. Están disponibles una gran cantidad de informaciones de secuencias génicas para la industria farmacéutica. Estas informaciones proporcionarían nuevas dianas para fármacos. Sin embargo, la función de la mayoría de los genes y las proteínas relacionadas en un organismo sigue siendo desconocida y la eficiencia de la validación de dianas no parece haber cambiado significativamente.

Los estudios genéticos y la genómica estructural han mostrado que las rutas bioquímicas y la fisiología están sumamente conservadas en todo el mundo animal. Por tanto, pueden usarse modelos animales para investigar procedimientos relevantes para enfermedades humanas. El modelo animal puede usarse para identificar y validar eficazmente dianas de cribado óptimas. La selección de dianas de cribado puede mejorarse y conducirá a menos fallos y a un procedimiento de desarrollo de fármacos más eficaz.

El ratón es un modelo de mamífero muy conocido que se usa abundantemente. El procedimiento más ampliamente usado para la producción de animales transgénicos es la microinyección de ADN en los pronúcleos de embriones fecundados. Este procedimiento es bastante eficiente para la producción de ratones transgénicos pero es mucho menos eficaz para la producción de mamíferos transgénicos grandes tales como vacas y ovejas. Además, los animales transgénicos del procedimiento de transgénesis disponible son frecuentemente un mosaico para el transgén dando como resultado la falta de transmisión del transgén a la progenie. Algunos animales presentan una alta resistencia a la transgénesis tales como peces o aves. Entre ellos, el problema de transgénesis de peces se detalla más a continuación.

Los peces de pecera han alcanzado una alta popularidad como modelos de vertebrados en la biología y la genética del desarrollo. De hecho, el pez cebra (Danio rerio) es un sistema de modelo popular para estudios de desarrollo de vertebrados porque ofrece la oportunidad de combinar análisis de genética clásica con un embrión fácilmente accesible y manipulable. Los estudios genéticos de los peces cebra se benefician del tiempo de generación de 2-3 meses, la capacidad de las hembras de poner rutinariamente cientos de huevos y el pequeño tamaño de los adultos. Los estudios embriológicos se benefician de los grandes embriones transparentes.

Sin embargo, la utilidad de peces de pecera está todavía limitada por la falta de algunas herramientas metodológicas, sobre todo una tecnología simple y eficaz para la transgénesis, que se ha convertido en una técnica importante en la investigación fundamental y tiene varias aplicaciones en agronomía y biomedicina. En particular, los intentos por establecer células madre embriónicas (ES) en peces como vectores celulares para la transgénesis ha sido hasta la fecha poco satisfactorios.

Por tanto, el procedimiento de elección para generar peces transgénicos sigue siendo la inyección de altas concentraciones de ADN (aproximadamente 106 copias de plásmidos) en el citoplasma de embriones en la fase de una célula. Los plásmidos han sido microinyectados en forma linealizada y circular...

 


Reivindicaciones:

1. Un procedimiento no terapéutico para integrar aleatoriamente un polinucleótido en un genoma de la célula huésped mediante preparación en la célula huésped de dicho polinucleótido lineal que tiene extremos 5' y 3' libres a partir de un vector, en el que dicho procedimiento comprende:

a) Introducir en dicha célula huésped un vector que no tiene extremos 5' y 3' libres y que comprende dicho polinucleótido, comprendiendo dicho vector al menos un sitio de escisión que no se encuentra en el genoma de la célula huésped;
b) producir la escisión de dicho(s) sitio(s) en dicha célula huésped, creando o liberando así dicho polinucleótido en una forma lineal que tiene extremos 5' y 3' libres a partir de dicho vector en dicha célula huésped; y,
c) mantener la célula huésped en condiciones y durante un periodo de tiempo suficiente para producir la integración aleatoria de dicho polinucleótido liberado en dicho genoma de la célula huésped,

y en el que dicha célula huésped es una célula no humana.

2. Un procedimiento in vitro para integrar aleatoriamente un polinucleótido en un genoma de la célula huésped mediante preparación en la célula huésped de dicho polinucleótido lineal que tiene extremos 5' y 3' libres a partir de un vector, en el que dicho procedimiento comprende:

a) Introducir en dicha célula huésped un vector que no tiene extremos 5' y 3' libres y que comprende dicho polinucleótido, comprendiendo dicho vector al menos un sitio de escisión que no se encuentra en el genoma de la célula huésped;
b) producir la escisión de dicho(s) sitio(s) en dicha célula huésped, creando o liberando así dicho polinucleótido en una forma lineal que tiene extremos 5' y 3' libres a partir de dicho vector en dicha célula huésped; y,
c) mantener la célula huésped en condiciones y durante un periodo de tiempo suficiente para producir la integración aleatoria de dicho polinucleótido liberado en dicho genoma de la célula huésped,

y en el que dicha célula huésped es una célula somática no embriónica humana.

3. Procedimiento según la reivindicación 1 ó 2, en el que dicho procedimiento comprende además, antes de la etapa (b), una etapa adicional de introducir en dicha célula huésped un agente de escisión o un vector que comprende un ácido nucleico que codifica dicho agente de escisión.

4. Procedimiento según la reivindicación 3, en el que dicho procedimiento comprende además, antes de la etapa (b), una etapa adicional de introducir en dicha célula huésped un agente de escisión.

5. Procedimiento según la reivindicación 1-4, en el que dicho polinucleótido está flanqueado por al menos un sitio de escisión.

6. Procedimiento según la reivindicación 5, en el que dicho polinucleótido está flanqueado por dos sitios de escisión.

7. Procedimiento según la reivindicación 1-6, en el que dicho sitio de escisión es un sitio de endonucleasa y dicho agente de escisión es la endonucleasa correspondiente.

8. Procedimiento según la reivindicación 7, en el que dicha endonucleasa tiene un sitio de reconocimiento de al menos 12 nucleótidos.

9. Procedimiento según la reivindicación 8, en el que dicha endonucleasa es una meganucleasa.

10. Procedimiento según la reivindicación 9, en el que dicha meganucleasa se selecciona del grupo que está constituido por I-Ceu I, I-Cre I, I-Chu I, I-Csm I, I-Dmo I, I-Pan I, I-Sce I, I-Sce II, I-Sce III, I-Sce IV, F-Sce I, F-Sce II, PI-Aae I, PI-Ape-I, PI-Ceu I, PI-Cir I, PI-Ctr I, PI-Dra I, PI-Mav I, PI-MfI I, PI-Mgo I, PI-Mja I, PI-Mka I, PI-Mle I, PI-Mtu I, PI-MtuH I, PI-Pab III, PI-Pfu I, PI-Pho I, PI-Pko I, PI-Psp I, PI-Rma I, PI-Sce I, PI-Ssp I, PI-Tfu I, PI-Tfu II, PI-TIi I, PI-TIi II, PI-Tsp I, PI-Tsp II, PI-Bsp I, PI-Mch I, PI-Mfa I, PI-Mga I, PI-Mga II, PI-Min I, PI-Mma I, PI-Msh I, PI-Msm II, PI-Mth I, PI-Tag I, PI-Thy II, I-Ncr I, I-Ncr II, I-Pan II, I-Tev I, I-Ppo I, I-Dir I, I-Hmu I, I-Hmu II, I-Tev II, I-Tev III, F-Sce I, F-Sce II (HO), F-Suv I, F-Tev I y F-Tev II.

11. Procedimiento según la reivindicación 10, en el que dicha meganucleasa se selecciona del grupo que está constituido por I-Ceu I, I-Cre I, I-Sce I.

12. Procedimiento según la reivindicación 8, en el que dicha endonucleasa es sintética.

13. Procedimiento según la reivindicación 1-12, en el que dicho polinucleótido no puede someterse a recombinación homóloga con el genoma de la célula huésped.

14. Procedimiento según la reivindicación 13, en el que las secuencias de 5' y 3' de dicho polinucleótido no tienen homología con una secuencia genómica de la célula huésped.

15. Procedimiento según la reivindicación 1-14, en el que dicho vector es un plásmido.

16. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 y 3-15, en el que dicha célula huésped no humana se selecciona del grupo que está constituido por una célula madre, una célula somática, un gameto, un blastómero y un huevo.

17. Procedimiento según la reivindicación 16, en el que dicha célula huésped no humana es una célula madre.

18. Procedimiento según la reivindicación 16, en el que dicha célula huésped no humana es una célula somática.

19. Procedimiento según la reivindicación 16, en el que dicha célula huésped no humana es un huevo.

20. Procedimiento según la reivindicación 1-19, en el que dicha secuencia de polinucleótidos es una secuencia que codifica un polipéptido o un antisentido, una secuencia reguladora o una secuencia de reconocimiento para una molécula.

21. Procedimiento según la reivindicación 17, en el que dicha célula huésped no humana proviene de pez, ave, mamíferos no humanos, insecto, anfibio o reptil.

22. Procedimiento según la reivindicación 21, en el que dicha célula huésped proviene de medaka, pez cebra, pez espinoso, Astyanax, ratones, pollos, Xenopus, ovejas, vaca, conejo.

23. Procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1 y 3-22, en el que el procedimiento comprende además la etapa de generar una célula de mamífero o pez, un animal mamífero no humano o pez transgénicos o una planta transgénica para producir proteína, biomolécula, biomaterial o vacuna.

24. Un procedimiento para producir un animal transgénico no humano, en el que células madre embriónicas se transfectan mediante el procedimiento según la reivindicación 1 y 3-22, las células se inyectan en embriones en una fase en la que pueden integrar las células transfectadas, los embriones se reimplantan luego en una madre sustituta y los individuos quiméricos obtenidos al final de la gestación, y en los que se observa la colonización por células madre embriónicas de la línea germinal, se aparean para obtener animales transgénicos.

25. Un procedimiento para producir un animal transgénico no humano en el que el huevo fecundado se transfecta mediante el procedimiento según la reivindicación 1 y 3-22, los huevos se reimplantan en una madre sustituta y los individuos transgénicos se obtienen al final de la gestación.

26. Un procedimiento para producir un animal transgénico no humano en el que el huevo fecundado se transfecta mediante el procedimiento según la reivindicación 1 y 3-22, los huevos se incuban en condiciones apropiadas para desarrollar dicho animal transgénico.

27. Una composición para transgénesis que comprende:

1) un vector que no tiene extremos libres 5' y 3' y que comprende un transgén que va a integrarse en un genoma de la célula huésped, comprendiendo dicho vector al menos un sitio de escisión que no se encuentra en dicho genoma de la célula huésped; y,
2) un agente de escisión o un vector que comprende un ácido nucleico que codifica dicho agente de escisión.

28. Composición según la reivindicación 27, en la que dicho polinucleótido está flanqueado por al menos un sitio de escisión.

29. Composición según la reivindicación 28, en la que dicho polinucleótido está flanqueado por dos sitios de escisión.

30. Composición según la reivindicación 26-29, en la que dicho sitio de escisión es un sitio de endonucleasa y dicho agente de escisión es la endonucleasa correspondiente.

31. Composición según la reivindicación 30, en la que dicha endonucleasa tiene un sitio de reconocimiento de al menos 12 nucleótidos.

32. Composición según la reivindicación 31, en la que dicha endonucleasa es una meganucleasa.

33. Composición según la reivindicación 32, en la que dicha meganucleasa se selecciona del grupo que está constituido por I-Ceu I, I-Cre I, I-Chu I, I-Csm I. I-Dmo I, I-Pan I, I-Sce I, I-Sce II, I-Sce III. I-Sce IV, F-Sce I, F-Sce II, PI-Aae I, PI-Ape I, PI-Ceu I, PI-Cir I, PI-Ctr I, PI-Dra I, PI-Mav I, PI-Mfl I, PI-Mgo I, PI-Mja I, PI-Mka I, PI-Mle I, PI-Mtu I, PI-MtuH I, PI-Pab III, PI-Pfu I, PI-Pho I, PI-Pko I, PI-Psp I, PI-Rma I, PI-Sce I, PI-Ssp I, PI-Tfu I, PI-Tfu II, PI-Tli I, PI-Tli II, PI-Tsp I, PI-Tsp II, PI-Bsp I, PI-Mch I, PI-Mfa I, PI-Mga I, PI-Mga II, PI-Min I, PI-Mma I, PI-Msh I, PI-Msm II, PI-Mth I, PI-Tag I, PI-Thy II, I-Ncr I, I-Ncr II, I-Pan II, I-Tev I, I-Ppo I, I-Dir I, I-Hmu I, I-Hmu II, I-Tev II, I-Tev III, F-Sce I, F-Sce II (HO), F-Suv I, F-Tev I y F-Tev II.

34. Composición según la reivindicación 33, en la que dicha meganucleasa se selecciona del grupo que está constituido por I-Ceu I, I-Cre I, I-Sce I.

35. Composición según la reivindicación 32, en la que dicha endonucleasa es sintética.

36. Composición según la reivindicación 27-35, en la que dicho vector es un plásmido.

37. Composición según la reivindicación 27-36, en la que dicho vector que comprende dicha secuencia de polinucleótidos que va a linealizarse comprende además dicho ácido nucleico que codifica dicho agente de escisión.

38. Composición según la reivindicación 27-37, en la que dicho polinucleótido no puede someterse a recombinación homóloga con el genoma de la célula huésped.

39. Composición según la reivindicación 38, en la que las secuencias de 5' y 3' de dicho polinucleótido no tienen homología con una secuencia genómica de la célula huésped.


 

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