13 inventos, patentes y modelos de ORFAO DE MATOS CORREIA E VALE, JOSE ALBERTO
Reactivos, métodos y kits para el diagnóstico de inmunodeficiencias primarias.
Secciones de la CIP Física Química y metalurgia
(24/04/2019). Solicitante/s: ERASMUS UNIVERSITY MEDICAL CENTER ROTTERDAM. Clasificación: G01N33/569, G01N15/14, C07K16/00.
Una composición de reactivos para la inmunofenotipificación por citometría de flujo de leucocitos que comprende anticuerpos conjugados con fluorocromo marcados de manera específica y dirigidos contra la siguiente combinación de marcadores:
(a) CD27, IgM, IgA, IgG, IgD, CD19, CD21, CD38, e IgE.
PDF original: ES-2732476_T3.pdf
Métodos, reactivos y kits para inmunofenotipado por citometría de flujo.
Sección de la CIP Física
(20/02/2019). Solicitante/s: ERASMUS UNIVERSITY MEDICAL CENTER ROTTERDAM. Clasificación: G01N33/58, G01N33/50, G01N15/14, G01N33/574, G01N33/533, G01N33/532.
Una composición reactiva para inmunofenotipado por citometría de flujo de leucocitos que comprende al menos ocho anticuerpos conjugados con fluorocromo diferentes que comprende un conjunto de al menos tres anticuerpos de identificación para la identificación de una población de leucocitos de interés y al menos cuatro anticuerpos de caracterización para una caracterización adicional y/o la clasificación de dicha población de leucocitos, en donde los anticuerpos están dirigidos contra la siguiente combinación de marcadores:
cyCD3, CD45, cyMPO, cyCD79a, CD34, CD19, CD7 y CD3.
PDF original: ES-2724633_T3.pdf
Métodos y medios para monitorizar la alteración de la homeostasis tisular en el cuerpo total.
(17/05/2017) Un método para determinar el estado de salud de un sujeto, para la detección temprana de daño tisular, para el diagnóstico precoz y el control de una enfermedad, y/o para la evaluación de la eficacia del tratamiento en un sujeto usando macrófagos de tejido en circulación como espejo homeostasis interrumpida y enfermedad en un tejido, comprendiendo el método las etapas de:
a) tinción de una muestra de ensayo biológica aislada del sujeto, cuya muestra se sabe o se espera que contenga macrófagos de tejido en circulación (CTM) con un panel de anticuerpos distintos diferenciadamente marcados contra los marcadores de armazón CD14, CD16 y CD300e y preferiblemente además HLADR, para la identificación y enumeración de diferentes subconjuntos de…
Métodos, reactivos y kits para inmunofenotipado por citometría de flujo.
Sección de la CIP Física
(19/04/2017). Solicitante/s: ERASMUS UNIVERSITY MEDICAL CENTER ROTTERDAM. Clasificación: G01N33/58, G01N33/50, G01N33/574.
Una composición reactiva para inmunofenotipado por citometría de flujo de leucocitos que comprende al menos ocho anticuerpos conjugados con fluorocromo diferentes que comprende un conjunto de al menos tres anticuerpos de identificación para la identificación de una población de leucocitos de interés y al menos cuatro anticuerpos de caracterización para una caracterización adicional y/o la clasificación de dicha población de leucocitos, en donde los anticuerpos están dirigidos contra la siguiente combinación de marcadores:
CD45, CD138, CD38, CD56, β2micro, CD19, CyIgκ y CyIgλ.
PDF original: ES-2627952_T3.pdf
Métodos, reactivos y kits para detectar enfermedad residual mínima.
Sección de la CIP Física
(07/09/2016). Solicitante/s: ERASMUS UNIVERSITY MEDICAL CENTER ROTTERDAM. Clasificación: G01N33/50, G01N33/574.
Un kit de diagnóstico, que comprende dos composiciones reactivas de 8 colores para la detección por citometría de flujo de mieloma múltiple (MM) o trastornos de células plasmáticas (PCD) en un sujeto humano, comprendiendo las composiciones reactivas de 8 colores distintos paneles de anticuerpos conjugados con fluorocromo dirigidos contra las siguientes combinaciones de marcadores:
(i) CD138, CD27, CD38, CD56, CD45, CD19, CD117 y CD81; y
(ii) CD138, CD27, CD38, CD56, CD45, CD19, CyIgκ y CyIgλ.
PDF original: ES-2660429_T3.pdf
Métodos, reactivos y kits para detectar enfermedad residual mínima.
Sección de la CIP Física
(27/04/2016). Solicitante/s: ERASMUS UNIVERSITY MEDICAL CENTER ROTTERDAM. Clasificación: G01N33/50, G01N33/574.
Una composición de reactivo para detección por citometría de flujo de precursor de célula B ALL (BCP-ALL) en un sujeto humano, que comprende un panel de por lo menos ocho anticuerpos conjugados a fluorocromo distintos, el panel comprende por lo menos anticuerpos contra los marcadores de núcleo CD10, CD19, CD20, CD34 y CD45, y en donde el panel adicionalmente comprende uno o más anticuerpos seleccionados del grupo de anticuerpos contra CD38, CD81, CyIgμ, y desoxinucleotidil transferasa (NuTdT), y en donde el panel adicionalmente comprende uno o más conjuntos de anticuerpos seleccionados de
(a) conjunto de anticuerpos contra CD66c y CD123;
(b) conjunto de anticuerpos contra CD304 y CD73; y
(c) conjunto de anticuerpos contra SmIgk y SmIgλ.
en donde los anticuerpos dentro de cada conjunto se conjugan al mismo fluorocromo y en donde entre diferentes conjuntos los fluorocromos son distinguibles.
PDF original: ES-2577633_T3.pdf
Método para la detección de infiltración cancerosa en el sistema nervioso central.
Sección de la CIP Física
(20/01/2016). Solicitante/s: UNIVERSIDAD DE SALAMANCA. Clasificación: G01N33/574.
Método para detectar la presencia de infiltración en el sistema nervioso central por parte de linfocitos B en una muestra de líquido cefalorraquídeo (LCR) de un sujeto, que comprende determinar la presencia de la proteína CD19 soluble derivada de células tumorales, liberada desde células tumorales en el LCR, que comprende los pasos de:
a. Proporcionar una muestra biológica de LCR del sujeto,
b. Capturar la proteína CD19 soluble asociada a células tumorales en una plataforma sólida compuesta de al menos un pocillo de placa para ELISA, una inmunoperla o spot de matriz de superficie plana, a través de un conjunto de al menos una sonda, y
c. detectar y/o cuantificar dicha proteína soluble asociada a células tumorales,
en donde el cáncer se selecciona del grupo que consiste en linfoma no Hodgkin de linfocitos B agresivo, linfoma no Hodgkin de linfocitos B de grado bajo y leucemia linfocítica B crónica.
PDF original: ES-2571380_T3.pdf
Métodos, reactivos y kits para inmunofenotipado por citometría de flujo.
(12/03/2014) Una composición reactiva para inmunofenotipado por citometría de flujo de leucocitos que comprende al menos ocho anticuerpos conjugados con fluorocromo diferentes que comprende un conjunto de al menos tres anticuerpos de identificación para la identificación de una población de leucocitos de interés y al menos cuatro anticuerpos de caracterización para una caracterización adicional y/o la clasificación de dicha población de leucocitos, en donde los anticuerpos están dirigidos contra la siguiente combinación de marcadores: CD20, CD4, CD45, CD19, Igλ, CD8, Ig κ, CD56, CD5, TCRγδ, CD3 y CD38, en donde el anticuerpo dentro de los pares CD20/CD4, Igλ/CD8 y CD19 /TCRγ δ se conjuga al mismo fluorocromo, y en donde entre diferentes pares los fluorocromos son distinguibles.
GENERACIÓN DE ARCHIVOS DE DATOS DE CITOMETRÍA DE FLUJO CON UN NÚMERO POTENCIALMENTE INFINITO DE DIMENSIONES DERIVADAS DE LA FUSIÓN DE UN GRUPO DE ARCHIVOS DE DATOS DE CITOMETRÍA DE FLUJO SEPARADOS Y SU RECONSTRUCCIÓN MULTIDIMENSIONAL TANTO CON DATOS DE CITOMETRÍA DE FLUJO MEDIDOS REALMENTE COMO ESTIMADOS.
(03/06/2011) Un procedimiento para la generación de nuevos archivos de datos de citometría de flujo a partir de archivos de datos originales que contienen datos de parámetros acerca de eventos medidos en diferentes partes alícuotas de la misma muestra, en el que cada archivo de datos originales comprende datos de parámetros comunes que corresponden a parámetros medidos para todas las partes alícuotas y datos de parámetros no comunes que corresponden a parámetros medidos solo para algunas partes alícuotas, comprendiendo el procedimiento la etapa de: a) fusionar dos o más archivos de datos originales en un archivo; caracterizado por comprender además las etapas de, b) para cada evento del archivo fusionado, estimar los datos de parámetros no…
PROCEDIMIENTO PARA CONTROLAR EL RECUENTO DEL NUMERO ABSOLUTO DE CELULAS U OTRAS PARTICULAS PRESENTES EN UNA MUESTRA.
(01/03/2005) Un método para el control, mediante citometría de flujo, del recuento del número absoluto de células (u otras partículas) por unidad de volumen de una muestra, basado en el uso de una mezcla de dos o más tipos de partículas de referencia con características diferentes, caracterizado porque comprende las etapas de: a) preparar una mezcla, en proporciones y cantidades conocidas, de dos o más poblaciones de partículas de referencia con características diferentes; b) añadir una cantidad conocida de dicha mezcla a un volumen conocido de la muestra que contiene las células u otras partículas que se pretende contar, obteniéndose…
PROCEDIMIENTO PARA CONTROLAR EL RECUENTO DEL NUMERO ABSOLUTO DE CELULAS U OTRAS PARTICULAS PRESENTES EN UNA MUESTRA.
(16/09/2004) Procedimiento para controlar el recuento del número absoluto de células (u otras partículas) presentes en una muestra. Comprende: preparar una mezcla o solución madre, en proporciones y cantidades conocidas, de dos o más poblaciones de partículas de referencia con características diferentes; añadir una cantidad conocida de esa mezcla de partículas de referencia, a un volumen conocido de la muestra que contiene las células (u otras partículas) que se pretende contar; medir, en un citómetro de flujo, la muestra que contiene tanto las células (u otras partículas), los eventos que se pretende contar como la mezcla de diferentes poblaciones de partículas de referencia; calcular el número absoluto de células (u otras partículas) presentes en la muestra que se pretende contar y; comprobar que la proporción…
PROCEDIMIENTO PARA EL ESTUDIO DE LA ACTIVACION FUNCIONAL DE LEUCOCITOS, PLAQUETAS Y OTRAS CELULAS.
Secciones de la CIP Física Química y metalurgia
(16/09/2004). Solicitante/s: UNIVERSIDAD DE SALAMANCA. Clasificación: G01N33/58, G01N33/569, G01N33/68, G01N33/577, C12Q1/37, G01N33/80.
Procedimiento para el estudio de la activación funcional de leucocitos, plaquetas y otras células, producida in vivo o inducida in vitro, basada en la estabilización de proteínas de membrana citoplasmática y su detección mediante técnicas de citometría cuantitativa sin manipulación adicional de la muestra que comprende las etapas de: a) incubar la muestra de forma secuencial con un inhibidor o una mezcla de inhibidores específicos de proteasas y con una mezcla de anticuerpos conjugados directamente con fluorocromos; b) medir mediante citometría cuantitativa las emisiones fluorescentes de los fluorocromos unidos a las células a través de anticuerpos, c) analizar los resultados obtenidos mediante análisis multiparamétrico para identificar las subpoblaciones celulares de interés y dentro de ellas las que expresan las proteínas de membrana estabilizadas cuantificando su expresión de forma objetiva en base a la intensidad de fluorescencia detectada.
PROCEDIMIENTO PARA EL ESTUDIO DEL CICLO CELULAR DE SUBPOBLACIONES DE CELULAS PRESENTES EN MUESTRAS CELULARES HETEROGENEAS.
Secciones de la CIP Química y metalurgia Física
(16/12/1998). Solicitante/s: UNIVERSIDAD DE SALAMANCA. Clasificación: C12N5/10, G01N33/533, C12Q1/04.
PROCEDIMIENTO PARA EL ESTUDIO DEL CICLO CELULAR DE SUBPOBLACIONES DE CELULAS PRESENTES EN MUESTRAS CELULARES HETEROGENEAS. COMPRENDE: INCUBAR LA MUESTRA DE FORMA SECUENCIAL CON: 1) UN POOL DE ANTICUERPOS MONOCLONALES DIFERENTES MARCADOS CON UN MISMO FLUOROCROMO Y 2) CON UN FLUOROCROMO QUE SE UNE DE FORMA ESPECIFICA A ACIDOS NUCLEICOS; MEDIR POR CITOMETRIA DE FLUJO LAS EMISIONES FLUORESCENTES; DETERMINAR EL CICLO CELULAR DE FORMA ESPECIFICA DE LAS SUBPOBLACIONES DE CELULAS DE LA MUESTRA IDENTIFICADAS MEDIANTE ANALISIS MULTIPARAMETRICO QUE PERMITE CONOCER TODOS LOS TIPOS CELULARES IDENTIFICADOS LA PROPORCION DE CELULAS EN LAS FASES G0/G1, DE SINTESIS DE ADN (S) Y G2/MITOSIS (G2/M) DEL CICLO CELULAR.