Beta-glucosidasa BGL3 y ácidos nucleicos que la codifican.

Un polinucleótido aislado seleccionado del grupo que consiste en:



(a) una secuencia de ácido nucleico que codifica o es complementaria de una secuencia que codifica un polipéptidoBGL3, que tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia de aminoácidos presentada comoSEQ ID NO: 21 en la tabla 1.

(b) una secuencia de ácido nucleico que codifica o es complementaria de una secuencia que codifica un polipéptidoBGL3 que tiene la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1; y

(c) una secuencia de ácido nucleico presentada como SEQ ID NO: 4 en la tabla 1 o la complementaria de la misma;en el que el % de identidad se calcula como la identidad de la secuencia de aminoácidos de BGL3 presentada comoSEQ ID NO: 2 en la tabla 1 a lo largo de su longitud entera, usando el programa CLUSTAL-W de MacVector versión6.5, utilizando los parámetros por defecto que incluyen una penalización de apertura de hueco de 10,0, unapenalización de extensión de hueco de 0,1 y una matriz de similitud BLOSUM 30.

Tipo: Patente Internacional (Tratado de Cooperación de Patentes). Resumen de patente/invención. Número de Solicitud: PCT/US2002/024242.

Solicitante: GENENCOR INTERNATIONAL INC..

Nacionalidad solicitante: Estados Unidos de América.

Dirección: 925 PAGE MILL ROAD PALO ALTO, CA 94304 ESTADOS UNIDOS DE AMERICA.

Inventor/es: WARD, MICHAEL, DUNN-COLEMAN,NIGEL, YAO,JIAN, GOEDEGEBUUR,FRITS.

Fecha de Publicación: .

Clasificación Internacional de Patentes:

  • A21D8/04 NECESIDADES CORRIENTES DE LA VIDA.A21 COCCION EN HORNO; EQUIPAMIENTO PARA LA PREPARACION O EL TRATAMIENTO DE LA MASA; MASAS PARA COCER EN HORNO.A21D TRATAMIENTO, p.ej. CONSERVACION DE LA HARINA O DE LA MASA, p.ej. POR ADICION DE INGREDIENTES; COCCION; PRODUCTOS DE PANADERIA; SU CONSERVACION. › A21D 8/00 Métodos de preparación o de cocción de la masa (tratamiento de la harina o de la masa por adición de ingredientes A21D 2/00). › tratando la masa con microorganismos o enzimas.
  • C11D3/386 QUIMICA; METALURGIA.C11 ACEITES, GRASAS, MATERIAS GRASAS O CERAS ANIMALES O VEGETALES; SUS ACIDOS GRASOS; DETERGENTES; VELAS.C11D COMPOSICIONES DETERGENTES; UTILIZACION DE UNA SOLA SUSTANCIA COMO DETERGENTE; JABON O SU FABRICACION; JABONES DE RESINA; RECUPERACION DE LA GLICERINA.C11D 3/00 Otros compuestos que entran en las composiciones detergentes cubiertas por C11D 1/00. › Preparaciones que contienen enzimas.
  • C12N15/113 C […] › C12 BIOQUIMICA; CERVEZA; BEBIDAS ALCOHOLICAS; VINO; VINAGRE; MICROBIOLOGIA; ENZIMOLOGIA; TECNICAS DE MUTACION O DE GENETICA.C12N MICROORGANISMOS O ENZIMAS; COMPOSICIONES QUE LOS CONTIENEN; PROPAGACION, CULTIVO O CONSERVACION DE MICROORGANISMOS; TECNICAS DE MUTACION O DE INGENIERIA GENETICA; MEDIOS DE CULTIVO (medios para ensayos microbiológicos C12Q 1/00). › C12N 15/00 Técnicas de mutación o de ingeniería genética; ADN o ARN relacionado con la ingeniería genética, vectores, p. ej. plásmidos, o su aislamiento, su preparación o su purificación; Utilización de huéspedes para ello (mutantes o microorganismos modificados por ingeniería genética C12N 1/00, C12N 5/00, C12N 7/00; nuevas plantas en sí A01H; reproducción de plantas por técnicas de cultivo de tejidos A01H 4/00; nuevas razas animales en sí A01K 67/00; utilización de preparaciones medicinales que contienen material genético que es introducido en células del cuerpo humano para tratar enfermedades genéticas, terapia génica A61K 48/00; péptidos en general C07K). › Acidos nucleicos no codificantes que modulan la expresión de genes, p.ej. oligonucleótidos antisentido.
  • C12N9/42 C12N […] › C12N 9/00 Enzimas, p. ej. ligasas (6.); Proenzimas; Composiciones que las contienen (preparaciones para la limpieza de los dientes que contienen enzimas A61K 8/66, A61Q 11/00; preparaciones de uso médico que contienen enzimas A61K 38/43; composiciones detergentes que contienen enzimas C11D ); Procesos para preparar, activar, inhibir, separar o purificar enzimas. › actúan sobre los enlaces beta-glucosídicos-1,4, p. ej. celulasa.

PDF original: ES-2396542_T3.pdf

 

Beta-glucosidasa BGL3 y ácidos nucleicos que la codifican.

Fragmento de la descripción:

Beta-glucosidasa BGL3 y ácidos nucleicos que la codifican

Apoyo del gobierno [0001] Partes de este trabajo han sido financiadas por el subcontrato n º ZCO-30017-01 con el Laboratorio Nacional de Energías Renovables bajo el contrato principal n º DE-AC36-99GO10337 con el Departamento de Energía de EE.UU. Por consiguiente, el Gobierno de Estados Unidos tiene algunos derechos en esta invención.

Campo de la invención [0002] La presente invención se refiere a secuencias de ácidos nucleicos de bgl3 aisladas, que codifican polipéptidos que tienen actividad de beta-glucosidasa. La invención también se refiere a construcciones de ácidos nucleicos, vectores y células huésped que comprenden las secuencias de ácidos nucleicos, así como a procedimientos para producir polipéptidos BGL3 recombinantes.

Referencias [0003]

Altschul, S. F., y col., J. Mol. Biol. 215: 403 – 410, 1990. Altschul, S. F., y col., Nucleic Acids Res. 25: 3389 – 3402, 1997. Aro, N., y col., J. Biol. Chem., 10.1074 / M003624200, April 13, 2001. Aubert, y col., Ed., pág. 11 y siguientes, Academic Press, 1988. Ausubel G. M., y col. CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY, John Wiley & Sons, New York, N.Y., 1993. Baldwin, D., y col., Curr. Opin. Plant Biol. 2 (2) : 96 – 103, 1999. Baulcombe, D., Arch. Virol. Suppl. 15: 189 – 201, 1999. Bhikhabhai, R. y col., J. Appl. Biochem. 6: 336, 1984. Brumbauer, A. y col., Bioseparation 7: 287 – 295, 1999. Carter y col., Nucl. Acids Res. 13: 4331, 1986. Chen y col., Biochem. Biophys. Acta. 1121: 54 – 60, 1992. Coligan, J. E. y col., eds., CURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY, 1991. Collen, A., y col., Journal of Chromatography A 910: 275 – 284, 2001. Coughlan, y col., BIOCHEMISTRY AND GENETICS OF CELLULOSE DEGRADATION. Cummings y Fowler, Curr. Genet. 29: 227 – 233, 1996. Dayhoff y col. en Atlas of Protein Sequence and Structure, Volumen 5, Suplemento 3, Capítulo 22, pág. 345 – 352, 1978. Deutscher, M.P., Methods Enzymol. 182: 779 – 80, 1990. Doolittle, R. F., OF URFs AND ORFs, University Science Books, CA, 1986. Ellouz, S. y col., J. Chromatography 396: 307, 1987. Fields y Song, Nature 340: 245 – 246, 1989. Filho, y col. Can. J. Microbiol. 42: 1 – 5, 1996. Fliess, A., y col., Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 17: 314, 1983. Freer, y col. J. Biol. Chem. 268: 9337 – 9342, 1993. Freshney, R. I., ed., ANIMAL CELL CULTURE, 1987. Goyal, A. y col. Bioresource Technol. 36: 37, 1991. Halldorsdottir, S y col., Appl Microbiol Biotechnol. 49 (3) : 277 – 84, 1998. Hu y col., Mol. Cell Biol. 11: 5792 – 9, 1991. Hemmpel, W.H. ITB Dyeing / Printing / Finishing 3: 5 – 14, 1991. Herr y col., Appl. Microbiol. Biotechnol. 5: 29 – 36, 1978. Jakobovits, A, y col., Ann. N. Y. Acad. Sci. 764: 525 – 35, 1995. Jakobovits, A, Curr. Opin. Biotechnol. 6 (5) : 561 – 6, 1995. Jones y col., Nature 321: 522 – 525, 1986. Kawaguchi, T y col., Gene 173 (2) : 287 – 8, 1996. Knowles, J. y col., TIBTECH 5, 255 – 261, 1987. Kohler y Milstein, Nature 256: 495, 1975. Krishna, S. y col., Bioresource Tech. 77: 193 – 196, 2001. Kumar, A., y col., Textile Chemist and Colorist 29: 37 – 42, 1997. Lehtio, J. y col., FEMS Microbiology Letters 195: 197 – 204, 2001. Li y Ljungdahl Appl. Environ. Microbiol. 62: 209 – 213, 1996.

Linder, M. y Teeri, T.T., Biotechnol. 57: 15 – 28, 1997. Medve, J. y col., J. Chromatography A 808: 153, 1998. Ohmiya y col., Biotechnol. Gen. Engineer. Rev. 14: 365 – 414, 1997. Ooi y col., Nucleic Acids Res. 18 (19) : 5884, 1990. Ortega y col., International Biodeterioration and Biodegradation 47: 7 – 14, 2001. Penttila y col., Yeast 3: 175 – 185, 1987. Penttila y col., Gene 63: 103 – 112, 1988. Pere, J., y col., en Proc. Tappi Pulping Conf., Nashville, TN, 27 – 31, pág. 693 – 696, 1996. Riechmann y col., Nature 332: 323 – 327, 1988. Rothstein y col., Gene 55: 353 – 356, 1987. Saarilahti y col., Gene 90: 9 – 14, 1990. Sakamoto y col., Curr. Genet. 27: 435 – 439, 1995. Saloheimo M, y col., Gene 63: 11 – 22, 1988. Sambrook y col., MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL (Second Edition) , Cold Spring Harbor Press, Plainview, N.Y., 1989. Schulein, Methods Enzymol., 160, 25, páginas 234 y siguientes, 1988. Scopes, Methods Enzymol. 90 Pt E: 479 – 90, 1982. Spilliaert R, y col., Eur. J. Biochem. 224 (3) : 923 – 30, 1994. Stahlberg, J. y col., Bio / Technol. 9: 286 – 290, 1991. Strathern y col., eds. (1981) The Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces. Suurnakki, A. y col., Cellulose 7: 189 – 209, 2000. Te’o, J. y col., FEMS Microbiology Letters 190: 13 – 19, 2000. Tilbeurgh, H. y col., FEBS Lett. 16: 215, 1984. Timberlake y col., Cell 1: 29 – 37, 1981. Tomaz, C. y Queiroz, J., J. Chromatography A 865: 123 – 128, 1999. Tomme, P. y col., Eur. J. Biochem. 170: 575 – 581, 1988. Tormo, J. y col., EMBO J. 15: 5739 – 5751, 1996. Tyndall, R.M., Textile Chemist and Colorist 24: 23 – 26, 1992. Van Rensburg y col., Yeast 14: 67 – 76, 1998. Van Tilbeurgh, H. y col., FEBS Lett. 204: 223 – 227, 1986. Verhoeyen y col., Science 239: 1534 – 1536, 1988. Warrington, y col., Genomics 13: 803 – 808, 1992. Wells y col., Gene 34: 315, 1985. Wells y col., Philos. Trans. R. Soc. London SerA 317: 415, 1986. Wood, Biochem. Soc. Trans., 13, pág. 407 – 410, 1985. Wood y col., METHODS IN ENZYMOLOGY, 160, 25, pág. 87 y siguientes, Academic Press, New York, 1988. Zoller y col., Nucl. Acids Res. 10: 6487, 1987.

Antecedentes de la invención [0004] La celulosa y hemicelulosa son los materiales vegetales más abundantes producidos por fotosíntesis. Los pueden degradar y usar como una fuente de energía numerosos microorganismos incluyendo bacterias, levaduras y hongos, que producen enzimas extracelulares capaces de hidrólisis de los sustratos polímeros a azúcares monómeros (Aro y col., 2001) . Puesto que los límites de las energías no renovables están cerca, el potencial de la celulosa para convertirse en una fuente principal de energía renovable es enorme (Krishna y col., 2001) . La utilización eficaz de la celulosa mediante procesos biológicos es un procedimiento para superar la escasez de alimentos, piensos y combustibles (Ohmiya y col., 1997) .

Las celulasas son enzimas que hidrolizan la celulosa (enlaces beta-1, 4-glucano o beta-D-glucosídico) produciendo la formación de glucosa, celobiosa, celooligosacáridos y similares. Las celulasas tradicionalmente se han dividido en tres clases principales: endoglucanasas (EC 3.2.1.4) ("EG") , exoglucanasas o celobiohidrolasas (EC 3.2.1.91) ("CBH") y beta-glucosidasas ([beta]-D-glucósido glucohidrolasa; EC 3.2.1.21) ("BG") . (Knowles y col., 1987; Shulein, 1988) . Las endoglucanasas actúan principalmente en las partes amorías de la fibra de celulosa, mientras que las celobiohidrolasas también son capaces de degradar la celulosa cristalina (Nevalainen y Penttila, 1995) . Por lo tanto, es necesaria la presencia de una celobiohidrolasa en un sistema de celulasa para la solubilización eficaz de la celulosa cristalina (Suurnakki, y col. 2000) . La beta-glucosidasa actúa para liberar unidades de D-glucosa de la celobiosa, celooligosacáridos, y otros glucósidos (Freer, 1993) .

Se sabe que las celulasas son producidas por un gran número de bacterias, levaduras y hongos. Algunos hongos producen un sistema de celulasa completo capaz de degradar formas cristalinas de la celulosa, de modo que las celulasas son producidas fácilmente en grandes cantidades por fermentación. Los hongos filamentosos tienen una función especial puesto que muchas levaduras, tales como Saccharomyces cerevisiae, carecen de la capacidad para hidrolizar la celulosa. Véase, p. ej., Aro y col., 2001; Aubert y col., 1988; Wood y col., 1988, y Coughlan, y col.

Las clasificaciones de celulasas fúngicas en CBH, EG y BG se pueden ampliar más para incluir múltiples componentes dentro de cada clasificación. Por ejemplo, se han aislado múltiples CBH, EG y BG de una variedad de fuentes fúngicas incluyendo Trichoderma reesei que contiene genes conocidos para 2 CBH, es decir, CBH I y CBH II, al menos 5 EG, es decir, EG I, EG II, EG III, EG IV y EG V, y al menos 2 BG, es decir, BG1 y BG2.

Con el fin de convertir eficazmente celulosa cristalina en glucosa, es necesario el sistema de celulasa completo que comprende componentes de cada una de las clasificaciones de CBH, EG y BG, siendo los componentes aislados menos eficaces en la hidrólisis de la celulosa cristalina (Filho y col., 1996) . Se ha observado una relación sinérgica entre los componentes de la celulasa... [Seguir leyendo]

 


Reivindicaciones:

1. Un polinucleótido aislado seleccionado del grupo que consiste en:

(a) una secuencia de ácido nucleico que codifica o es complementaria de una secuencia que codifica un polipéptido BGL3, que tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 21 en la tabla 1.

(b) una secuencia de ácido nucleico que codifica o es complementaria de una secuencia que codifica un polipéptido BGL3 que tiene la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1; y

(c) una secuencia de ácido nucleico presentada como SEQ ID NO: 4 en la tabla 1 o la complementaria de la misma;

en el que el % de identidad se calcula como la identidad de la secuencia de aminoácidos de BGL3 presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1 a lo largo de su longitud entera, usando el programa CLUSTAL-W de MacVector versión 6.5, utilizando los parámetros por defecto que incluyen una penalización de apertura de hueco de 10, 0, una penalización de extensión de hueco de 0, 1 y una matriz de similitud BLOSUM 30.

2. El polinucleótido aislado de la reivindicación 1, en el que dicho polinucleótido es una molécula de ARN.

3. Un polinucleótido aislado de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 y 2, que codifica una enzima que tiene actividad de 1-glucosidasa, en el que la enzima deriva de una fuente de Trichoderma.

4. El polinucleótido aislado de la reivindicación 3, en el que la enzima deriva de Trichoderma reesei.

5. Una construcción de expresión que incluye una secuencia de polinucleótido (i) que codifica o es complementaria de una secuencia que codifica un polipéptido BGL3 que tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1, o (ii) que es como se define en la reivindicación 2.

6. Un vector que incluye la construcción de expresión de la reivindicación 5.

7. Un vector que comprende un polinucleótido aislado de la reivindicación 1 o reivindicación 2, operativamente unido a secuencias de control reconocidas por una célula huésped transformada con el vector.

8. Una célula huésped transformada con el vector de la reivindicación 7 o la reivindicación 8.

9. Una célula huésped recombinante que comprende un polinucleótido de la reivindicación 1 o la reivindicación 2.

10. La célula huésped de la reivindicación 9 o la reivindicación 10, que es una célula procariota.

11. La célula huésped de la reivindicación 9 o la reivindicación 10, que es una célula eucariota.

12. Un polipéptido BGL3 purificado con la actividad biológica de una 1-glucosidasa, que comprende una secuencia seleccionada del grupo que consiste en:

(a) una secuencia de aminoácidos que tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1;

(b) una secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1;

(c) un fragmento biológicamente activo purificado de la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1;

en el que el % de identidad se calcula como la identidad con la secuencia de aminoácidos de BGL3 presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1 a lo largo de toda su longitud.

13. Un procedimiento de producción de una enzima que tiene actividad de 1-glucosidasa, que comprende:

(a) transformar establemente una célula huésped con un vector de expresión que comprende un polinucleótido como se define en la reivindicación 1 o la reivindicación 2;

(b) cultivar dicha célula huésped transformada en condiciones adecuadas para que dicha célula huésped produzca dicha 1-glucosidasa; y

(c) recuperar dicha 1-glucosidasa.

14. El procedimiento de la reivindicación 14, en el que la célula huésped es una célula de hongo filamentoso o de levadura.

15. Una enzima purificada que tiene actividad de 1-glucosidasa preparada por el procedimiento de la reivindicación 14.

16. Una célula huésped recombinante que comprende una eliminación o inserción u otra alteración en el gen bgl3 que inactiva el gen y previene la producción del polipéptido BGL3, en la que el polipéptido BGL3 tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia del polipéptido BGL3 presentado como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1, en el que el % de identidad se calcula como la identidad de la secuencia de aminoácidos de BGL3 presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1 a lo largo de toda su longitud.

17. Un oligonucleótido de sentido contrario complementario de un ARN mensajero que codifica un polipéptido BGL3 que tiene la secuencia presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1, en el que tras exposición a una célula huésped que produce 1-glucosidasa, dicho oligonucleótido disminuye o inhibe la producción de 1glucosidasa por dicha célula huésped.

18. El oligonucleótido de sentido contrario de la reivindicación 18, en el que la célula huésped es un hongo filamentoso.

19. Una composición de detergente, comprendiendo dicha composición un polipéptido seleccionado del grupo que consiste en:

(a) una secuencia de aminoácidos que tiene una identidad de secuencia de al menos 98 % con la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1;

(b) una secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1;

(c) un fragmento biológicamente activo purificado de la secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1,

en el que el % de identidad se calcula como la identidad con la secuencia de aminoácidos de BGL3 presentada como SEQ ID NO: 2 en la tabla 1 a lo largo de toda su longitud.

20. Un procedimiento para mejorar las características de una masa de levadura o producto horneado hecho con dicha masa, que consiste esencialmente en las etapas de:

(a) mezclar al menos aproximadamente 10 ppm de un BGL3 de acuerdo con la reivindicación 12 con ingredientes de masa para formar una mezcla de masa, y

(b) hornear dicha mezcla de masa para formar un producto horneado.

21. Un procedimiento para mejorar las características de la masa de pan de levadura o masa de bollo de levadura o pan de levadura o bollo de levadura, que consiste esencialmente en las etapas de:

(a) mezclar al menos aproximadamente 10 ppm de un BGL3 de acuerdo con la reivindicación 12 con ingredientes de masa de pan o de bollo, para formar una mezcla de masa, y

(b) dar forma o moldear la mezcla de masa;

(c) levar la mezcla de masa, y

(d) hornear la mezcla de masa para formar pan o bollos.

22. Un procedimiento para expresar un polipéptido heterólogo que tiene actividad de 1-glucosidasa en una especie de Aspergillus, que comprende:

(a) proporcionar un Aspergillus huésped con un vector de expresión que comprende un polinucleótido que codifica una secuencia señal de 1-glucosidasa de Aspergillus unida a un polinucleótido que codifica una 1-glucosidasa heteróloga 3 que comprende la SEQ ID NO: 2 en la tabla 1, codificando así un polipéptido quimérico;

(b) cultivar dicho Aspergillus huésped en condiciones adecuadas para que dicho Aspergillus produzca dicho polipéptido quimérico, en el que se produce dicho polipéptido quimérico.


 

Patentes similares o relacionadas:

Xilanasa mutante, método de fabricación y uso de la misma, y método para fabricar lignocelulosa sacarificada, del 29 de Julio de 2020, de MITSUI CHEMICALS, INC.: Una xilanasa mutante que comprende la secuencia de aminoácidos de la SEQ ID NO: 2 con una sustitución del resto de aminoácido en la posición 154 en la cual el resto de lisina […]

Agente para el lavado de la vajilla a máquina que contiene agentes de blanqueo, adyuvantes y enzimas, del 1 de Julio de 2020, de HENKEL AG & CO. KGAA: Agente para el lavado de la vajilla a máquina, caracterizado por que el agente para el lavado de la vajilla a máquina comprende: (A) una fase enzimática, […]

Composiciones y métodos que comprenden variantes de serina proteasa, del 17 de Junio de 2020, de THE PROCTER & GAMBLE COMPANY: Una composición limpiadora y/o tratante que comprende un material adyuvante y una variante de subtilisina aislada, en donde dicha variante de subtilisina tiene al menos 90 % de […]

Composición detergente, del 10 de Junio de 2020, de NOVOZYMES A/S: Uso de un polipéptido que tiene actividad de DNasa para prevenir, reducir o eliminar una biopelícula de un artículo, donde el polipéptido se obtiene […]

Material para eliminación de polvo de preparaciones de enzimas granulares, del 27 de Mayo de 2020, de Mauri Technology B.V: Material de eliminación de polvo granular que comprende 30 - 60% en peso de almidón de patata hinchado en frío, 5 - 40% en peso de aceite vegetal, 5 - 35% […]

Composiciones de lavandería y métodos de uso, del 13 de Mayo de 2020, de Ecolab USA Inc: Una composicion liquida de lavanderia, que comprende: a) de 0,05 a 5,0 por ciento en peso de un polimero de fijacion de color compuesto por al menos un […]

Método para el cuidado de la ropa con tintes, del 6 de Mayo de 2020, de THE PROCTER & GAMBLE COMPANY: Un método de tratamiento de una tela que comprende poliéster y/o nailon, comprendiendo el método las etapas de (i) tratar la tela con una solución acuosa que comprende […]

Composiciones enzimáticas líquidas estabilizadas, del 6 de Mayo de 2020, de NOVOZYMES A/S: Aldehído peptídico con la fórmula B2-B1-B0-H, donde: H es hidrógeno; B0 es un residuo de Tyr; B1 es un residuo de aminoácido de alanina, cisteína, glicina, […]

Utilizamos cookies para mejorar nuestros servicios y mostrarle publicidad relevante. Si continua navegando, consideramos que acepta su uso. Puede obtener más información aquí. .