Bacteria pasteurelácea atenuada que tiene una mutación en un gen de virulencia.

Una bacteria pasteurelácea atenuada seleccionada de Pasteurella multocida,

Pasteurella haemolytica,Actinobacillus pleuropneumoniae y Haemophilus somnus, comprendiendo la bacteria una mutación en un genrepresentado por una secuencia polinucleotídica que codifica un polipéptido yleA.

Bacteria pasteurelácea atenuada que tiene una mutación en un gen de virulencia Campo de la invención La presente invención se refiere de forma general a la identificación de genes responsables de la virulencia de las bacterias Pasteurella multocida y Actinobacillus pleuropneumoniae, permitiendo por lo tanto producción de cepas mutantes atenuadas útiles en vacunas y la identificación de agentes antibacterianos nuevos que tiene como objetivo los genes de virulencia y sus productos.

Antecedentes de la invención La familia de las pasteureláceas abarca varios patógenos significativos en una amplia diversidad de animales. Además de P. multocida, miembros destacados de la familia incluyen Pasteurella haemolytica, Actinobacillus pleuropneumoniae y Haemophilus somnus. P. multocida es un cocobacilo gram-negativo, carente de motilidad que se encuentra en la flora normal de muchos animales salvajes y domésticos y se conoce por causar enfermedad en numerosas especies animales en todo el mundo [Biberstein, In M. Kilian, W. Frederickson y E. L. Biberstein (ed.) , Haemophilus, Pasteurella und Actinobacillus. Academic Press. Londres, páginas 61-73 (1981) ]. Las manifestaciones morbosas tras la infección incluyen septicemias, bronconeumonías, rinitis e infecciones de heridas [revisado en Shewen y cols., In C. L. Gyles y C. O. Thoen (ed.) , Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. Iowa State University Press, Ames, p. 216-225 (1993) , incorporado aquí por referencia].

La infección por P. multocida resulta generalmente de la invasión durante periodos de estrés, pero la transmisión puede ocurrir también por aerosol o por exposición por contacto, o por medio de pulgas y garrapatas vectores. En aves 20 de corral, la infección por P. multocida da lugar a septicemia de aguda a peraguda, particularmente prevalente en pavos domésticos y aves acuáticas salvajes en condiciones de estrés asociadas con hacinamiento, puesta, muda, o cambio climático grave. En ganado, una septicemia hemorrágica similar sigue a la infección y manifiesta afecciones que incluyen fiebre alta y depresión, seguidas generalmente por muerte rápida. La transmisión es contacto con aerosol más probable, pero la infección puede surgir durante periodos de cambio climático significativo. En conejos, la 25 infección da lugar a rinitis purulenta recurrente, generalmente seguida por conjuntivitis, otitis media, sinusitis, abcesos subcutáneos y bronconeumonía crónica. En infecciones graves, la mortalidad de conejos surge de bronconeumonía fibrinosa aguda, septicemia, o endotoxemia. Los estados morbosos normalmente surgen durante periodos de estrés. En cerdos, los estados morbosos de P. multocida comunes incluyen rinitis atópica y neumonía bacteriana. Afecciones pulmonares similares también se detectan en perros, gatos, cabras y ovejas. P. multocida se detecta comúnmente en la flora oral de muchos animales y es por lo tanto un contaminante común en heridas de mordiscos y de arañazos.

Las cepas de P. multocida se designan normalmente por los serogrupos capsular y somático. Se distinguen cinco serogrupos capsulares (A, B, D, E y F) y 16 serotipos somáticos por expresión de antígenos térmicamente estables característicos. La mayoría de las cepas son específicas de huésped y raramente infectan más de uno o dos animales. La existencia de serotipos diferentes presenta un problema para vacunación debido a que las células bacterianas 35 completas muertas proporcionan normalmente solo protección específica de serotipo. Sin embargo, se ha demostrado que la infección natural con un serotipo puede conducir a protección inmunológica contra serotipos múltiples [Shewen y cols., In C. L. Gyles y C. O. Thoen (Ed.) , Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. Iowa State University Press, Ames, p. 216-225 (1993) ] y se puede estimular protección cruzada usando bacterias inactivadas in vivo [Rimler y cols., Am J Vet Res. 42: 2117-2121 (1981) ]. Una cepa de P. multocida mutante espontánea se ha utilizado como una vacuna y se ha mostrado que estimula una respuesta inmune fuerte [Davis, Poultr y Digest. 20: 430-434 (1987) , Schlink y cols., Avian Dis. 31 (1) : 13-21 (1987) ]. Esta cepa atenuada, sin embargo, ha mostrado revertir a un estado virulento o causar mortalidad si el receptor de la vacuna está estresado [Davis, Poultr y Digest. 20: 430-434 (1987) , Schlink y cols., Avian Dis. 31 (1) :13-21 (1987) ];

Otro miembro de la familia de las pasteureláceas, A. pleuropneumoniae muestra especificidad de huésped estricta 45 para cerdos y es el agente causante de pleuroneumonía porcina altamente contagiosa. La infección surge normalmente en condiciones de cría intensiva y se cree que ocurre por un modo directo de transmisión. La infección es a menudo fatal y como resultado conduce a pérdida económica grave en la industria de producción porcina. Una infección de pleuroneumonía puede ser aguda o crónica y la infección se caracteriza por una bronconeumonía hemorrágica, necrótica con pleuritis fibrinosa acompañante. Hasta la fecha, la virulencia bacteriana se ha atribuido a 50 proteínas estructurales, incluyendo polisacáridos capsulares específicos de serotipo, lipopolisacáridos y proteínas de superficie, así como a toxinas citolíticas extracelulares. A pesar de la purificación y en algunos casos clonación, de estos factores de virulencia, el papel exacto de estos factores de virulencia en una infección de pleuroneumonía se entiende pobremente.

Se han identificado doce serotipos de A. pleuropneumoniae basándose en diferencias antigénicas en polisacáridos 55 vasculares y en producción de toxinas extracelulares. Los serotipos 1, 5 y 7 son más relevantes para infección de A. pleuropneumoniae en los Estados Unidos, mientras que los serotipos 1, 2, 5, 7 y 9 son predominantes en Europa. Estas son al menos tres toxinas extracelulares significativas de A. pleuropneumoniae que son miembros de la familia de las hemolisinas y se refieren como toxinas RTX. Las toxinas RTX se producen por muchas bacterias gram negativas, incluyendo E. coli, Proteus vulgarisa y Pasteurella haemolytica y las proteínas muestran generalmente características estructurales y funcionales. Las toxinas a partir de los diversos serotipos difieren, sin embargo, en especificidad de huésped, células objetivo y actividades biológicas.

Las toxinas de A. pleuropneumoniae RTX principales incluyen ApxI, ApxII y ApxIII. ApxI y ApxII tienen actividad

hemolítica, con ApxI siendo más potente. ApxIII no muestra ninguna actividad hemolítica, pero es citotóxica para macrófagos alveolares y neutrófilos. La mayoría de los serotipos de A. pleuropneumoniae producen dos de estas tres toxinas. Por ejemplos, los serotipos 1, 5, 9 y 11 expresan ApxI y ApxII y los serotipos 2, 3, 4, 6 y 8 expresan ApxII y ApxIII. El serotipo 10, sin embargo, produce solo ApxI y serotipos 7 y 12 expresan solo ApxII. Aquellos serotipos de A. pleuropneumoniae que producen tanto ApxI como ApxII son las cepas más virulentas de las bacterias.

Las toxinas de Apx se demostró que eran factores de virulencia en modelos murinos e infección porcina usando bacterias de tipo silvestre mutadas al azar [Tascon y cols., Mol. Microbiol. 14: 207-216 (1994) ]. Otros mutantes de A. pleuropneumoniae se han generado también con mutagénesis dirigida para inactivar el gen que codifica la proteína de virulencia de membrana exterior de AopA [Mulks y Buysee, Gene 165: 61-66 (1995) ].

En intentos de producir composiciones de vacunas, las células bacterianas completas muertas tradicionales han proporcionado solo protección de serotipos [MacInnes y Smart, supra], sin embargo, se ha demostrado que la infección natural con un serotipo altamente virulento puede estimular fuerte inmunidad protectora contra serotipos múltiples [Nielsen, Nord Vet Med. 31: 407-13 (1979) , Nielsen, Nord Vet Med. 36: 221-234 (1984) , Nielsen, Can J Vet Res. 29: 580-582 (1988) ; Nielsen, ACTA Vet Scand. 15: 80-89 (1994) ]. Una cepa de vacuna atenuada viva definida que produce una forma inactiva de la toxina de ApxII ha mostrado promesa de protección cruzada en puercos [Prideaux y cols., Infection & Immunity 67: 1962-1966 (1999) ], mientras que otros mutantes atenuados vivos no definidos han mostrado también promesa [Inzana y cols., Infect Immun. 61: 1682-6 (1993) ; Paltineanu y cols., en International Pig Veterinar y Society, 1992, p. 214; Utrera y cols., en International Pig Veterinar y Society, 1992, p. 213].

Debido a los problemas asociados con formulaciones de vacuna que comprenden cepas bacterianas con mutaciones espontáneas, indefinidas, existe una necesidad en la técnica para construcción racional de cepas bacterianas atenuadas vivas para usar en vacunas que estimularán de forma segura la inmunidad protectora contra... [Seguir leyendo]

1. Una bacteria pasteurelácea atenuada seleccionada de Pasteurella multocida, Pasteurella haemolytica, Actinobacillus pleuropneumoniae y Haemophilus somnus, comprendiendo la bacteria una mutación en un gen representado por una secuencia polinucleotídica que codifica un polipéptido yleA

(i) en la que la secuencia polinucleotídica hibrida con el complemento de la SEC ID N.º: 80 en condiciones restrictivas, comprendiendo tales condiciones un lavado final en tampón que comprende SSC 2X/SDS al 0, 1 %, a 35 °C hasta 45 °C, o

(ii) en la que el polipéptido comprende una secuencia de aminoácidos al menos idéntica en un 80 % a la SEC ID N.º: 81,

en donde la atenuación de la bacteria está causada por dicha mutación.

2. La bacteria de la reivindicación 1, en la que dicha mutación da como resultado la expresión disminuida de un producto génico codificado por el gen mutado.

3. La bacteria de la reivindicación 1, en la que dicha mutación da como resultado la expresión de un producto génico inactivo codificado por el gen.

4. La bacteria de la reivindicación 1, en la que dicha mutación da como resultado la deleción de todo o parte de dicho gen.

5. La bacteria de la reivindicación 1, en la que dicha mutación da como resultado una inserción en dicho gen.

6. La bacteria de cualquier reivindicación anterior, en la que la bacteria es Pasteurella multocida.

7. La bacteria de la reivindicación 1, en la que la mutación está en la secuencia polinucleotídica de SEC ID N.º: 80.

8. Una composición inmunogénica que comprende la bacteria de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7.

9. Una composición vacunal que comprende una composición inmunogénica de la reivindicación 8 y un vehículo farmacéuticamente aceptable.

10. La composición vacunal de la reivindicación 10, que comprende adicionalmente un coadyuvante.

11. Un polinucleótido purificado y aislado que comprende una secuencia nucleotídica que codifica un polipéptido que tiene SEC ID N.º: 81.

12. El polinucleótido de la reivindicación 11, que comprende SEC ID N.º: 80.

13. Un polipéptido purificado que comprende SEC ID N.º: 81.